Biotechnologie

Ein Studiengang, zwei Vertiefungsrichtungen: Molekulare Biotechnologie und Bioprozesstechnik
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Fakultät M+V

Modulhandbuch

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Zellkulturtechnik

Empfohlene Vorkenntnisse

Allgeimene und anorganische, organische und analytische Chemie
Lehrform Vorlesung/Labor
Lernziele / Kompetenzen

Nach Abschluss dieses Moduls überblicken Studierende die Methoden zur Analyse von Biomolekülen, können diese erklären und praktisch anwenden. Sie sind in der Lage geeignete analytische Methoden für biotechnologische Fragestellungen auszuwählen. Ferner können Absolventinnen und Absolventen bioanalytische Ergebnisse bewerten und diskutieren.
Dauer 1
SWS 4.0
Aufwand
Lehrveranstaltung 60
Selbststudium / Gruppenarbeit: 90
Workload 150
ECTS 5.0
Voraussetzungen für die Vergabe von LP

Bioanalytik: Klausurarbeit, 60 Min.

Bioanalytik-Labor: Laborarbeit

Modulnote entspricht der Klausurnote.
Modulverantwortlicher

Prof. Dr. rer. nat. Fabian Eber
Empf. Semester 4
Haeufigkeit jedes Jahr (SS)
Verwendbarkeit

Bachelor BT - Hauptstudium
Veranstaltungen

Bioanalytik

Art Vorlesung
Nr. M+V1645
SWS 2.0
Lerninhalt
  • Proteinbestimmung, Enzymatische Aktivitätstests und Spektrometrie
  • Electrophoresis and Blotting
  • DNA Sequenzierung
  • Immunologische Techniken: ELISA, FACS
  • Chromatography
  • Mass spectrometry
  • Partikel Messung:
    Ultrazentrifugation, Feldflussfraktionierung, DLS, mikroskopische Methoden
  • Metabolomics, Genomics, Transcriptomics, Proteomics
Literatur
  • Kurreck, J. et al.: Bioanalytik; Springer Spektrum, 2021
  • Renneberg, R. et al.: Bioanalytik für Einsteiger; Springer Spektrum, 2020
  • Hug, H.: Instrumentelle Analytik: Theorie und Praxis; Europa Lehrmittel, 2015

Bioanalytik - Labor

Art Labor
Nr. M+V1646
SWS 2.0
Lerninhalt
  • 2D Polyacrylamid Gelelektrophorese
  • Sequenzierung nach Sanger und Kapillargelelektrophorese
  • HPLC: Qualifikation der Anlagenkomponenten
  • HPLC zur Gehaltsbestimmung
  • HPLC: Optimierungsstrategien zur Trennung von Molekülen 
Literatur
  • Rehm, H. & Letzel, T.: Der Experimentator: Proteinbiochemie/Proteomics; Springer Spektrum; 2016
  • Kromidas, S.: Der HPLC Experte; Wiley-VCH; 2014
  • Gey, M. H.: Instrumentelles und Bioanalytisches Praktikum; Springer Spektrum; 2017
  • Müllhardt, C.: Der Experimentator Molekularbiologie /Genomics; Springer Spektrum; 2014
  • Meyer, V. R.: Praxis der Hochleistungs-Flüssigchromatographie; Wiley-VCH; 2009 

Zellkulturtechnik

Art Vorlesung
Nr. M+V1654
SWS 2.0
Lerninhalt
  • Zellzyklus, Zelltod und Krebs
  • Das Zellkulturlabor: Steriltechnik und Kontaminationen
  • Kultivierung von Zellen: Kulturgefäße, Medien, Mediumwechel, Passagieren
  • Charakterisierung von Zellkulturen: Zellzahl, Vitalitäts- und Toxizitätstests, Cytometrie
  • Zellbiologische Methoden: Transfektion, Hybridomatechnik, Zellsorting
  • Primärkultur und permanente Zellkultur
  • Stammzellen, Tissue Engineering und Zelltherapie
  • Skalierung von Zellkultur
  • Pflanzenzellkultur
Literatur
  • Gstraunthaler, G. & Lindl, T.: Zell- und Gewebekultur - Allgemeine Grundlagen und spezielle Anwendungen. Springer Spektrum; 2013
  • Schmitz, S.: Der Experimentator Zellkultur; Springer Spektrum; 2020
  • Casper, C. et al.: Cell Culture Technology; Springer; 2018

Zellkulturtechnik - Labor

Art Labor
Nr. M+V1655
SWS 2.0
Lerninhalt
  • Steriltechnik
  • Kultivierung von suspendierten und adhärenten Zellen
  • Bestimmung der Zellzahl und Aufnahme von Wachstumskurven
  • Bestimmung der Vitalität von Zellen
  • Transfektion von Zellen
Literatur
  • Gstraunthaler, G. & Lindl, T.: Zell- und Gewebekultur - Allgemeine Grundlagen und spezielle Anwendungen. Springer Spektrum; 2013
  • Schmitz, S.: Der Experimentator Zellkultur; Springer Spektrum; 2020
  • Casper, C. et al.: Cell Culture Technology; Springer; 2018
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